3月1日，美國新墨西哥大學(xué)Joseph R. Stinziano等學(xué)者在期刊《Plant, Cell and Environment》（2015-2016影響因子為6.169）上發(fā)表了題為“The rapid A–Ci response: photosynthesis in the phenomic era”的文章。該項研究表明，全新光合-熒光測量系統LI-6800可以將傳統二氧化碳響應曲線(xiàn)A-Ci Curve的測量時(shí)長(cháng)縮短至5min以?xún)龋▓D1），這大大提高了其測量效率，可用于大批量樣品優(yōu)良性狀或突變體篩選。

圖1 快速A-Ci響應曲線(xiàn)數據
 

通過(guò)分析植物重要的生理參數，研究者可以篩選出具備優(yōu)良性狀的品種，如高產(chǎn)或高水分利用效率的。在眾多的篩選工具中，葉片水平的氣體交換測量（Gas Exchange Measurement）是zui可靠的一種方法。

二氧化碳響應曲線(xiàn)A-Ci Curve可以提供碳同化過(guò)程中有關(guān)生化限制的機制信息。這些信息可用于植物和植被生長(cháng)模型中（Farquhar et al. 1980; Duursma & Medlyn 2012; Oleson et al. 2013）。測量A-Ci 曲線(xiàn)后，利用模型可以計算得到zui大羧化速率Vc,max以及zui大電子傳遞速率Jmax（Sharkey et al. 2007），這兩個(gè)參數在評估作物性狀時(shí)非常有用。

FvCB是用于解釋A-Ci Curve的一個(gè)穩態(tài)模型（Farquhar et al. 1980）。在進(jìn)行A-Ci Curve測量時(shí)，通常我們會(huì )設置一系列CO₂濃度，并且要求在某個(gè)CO₂濃度下，葉片適應幾分鐘后完成一個(gè)穩態(tài)測量（e.g. Long & Bernacchi 2003）。這種測量的缺點(diǎn)就是測量時(shí)間太長(cháng)，一條完整的A-Ci Curve大約需要20-30mins。在樣本量多，重復數多的情況下，用這種方法作為篩選工具幾乎沒(méi)有可行性。而且，在整個(gè)測量過(guò)程中，酶的激活狀態(tài)會(huì )有變化，葉綠體會(huì )移動(dòng)，氣孔開(kāi)度也會(huì )有所改變。

在過(guò)去10年間，學(xué)術(shù)界研究的大方向是如何對采集的數據進(jìn)行優(yōu)化擬合（Ethier & Livingston 2004;Sharkey et al. 2007; Gu et al. 2010; Duursma 2015; Bellasio et al. 2016a, 2016b）。只有少數學(xué)者在測量方法上做過(guò)一些嘗試：早期的替代方法是由Davis等人于1987年提出的。他們采用的是閉路式的測量方法，整個(gè)測量過(guò)程中Chamber內CO₂濃度會(huì )一直下降；1989年，McDermitt等人的研究發(fā)現，采用閉路系統測量大豆葉片A-Ci Curve時(shí)，如果將Chamber內CO₂的下降速度維持在0.01至1μmol/mol/s上，測量結果和用開(kāi)路式的沒(méi)有差別。閉路式測量雖然耗時(shí)短，但是，它會(huì )改變Chamber內的溫度、壓強和水汽濃度（Long & Hällgren 1993）。隨后，Laisk和Oja在1998年發(fā)現，短時(shí)間內（1s），即便大幅改變葉片外部CO₂濃度后，葉片內Rubisco羧化反應可以很快達到表觀(guān)上的穩定。這些實(shí)驗結果均表明，葉片可以在短時(shí)間內快速適應周?chē)諝庵蠧O₂的變化。

能否進(jìn)行快速開(kāi)路式測量，需要儀器做到兩點(diǎn)。*，儀器有能力在短時(shí)間內迅速調整Chamber內的CO₂濃度； 第二，紅外氣體分析器IRGA可以對這種快速變化進(jìn)行測量。LI-6800*的Auto Control功能在算法上允許用戶(hù)自定義CO₂控制的起始和終止濃度（圖2），以及變化方式（如線(xiàn)性）和所花費的時(shí)間；LI-6800的全新設計的分流裝置位于分析器頭部，而不是在主機；并且， IRGA的測量響應頻率非?？?。這些保證了可以對進(jìn)出Chamber氣體中的CO₂進(jìn)行快速開(kāi)路式測量。因此，全新光合-熒光測量系統LI-6800可以將傳統二氧化碳響應曲線(xiàn)A-Ci Curve的測量時(shí)長(cháng)縮短至5min以?xún)?，這大大提高了其測量效率，可用于大批量樣品優(yōu)良性狀或突變體篩選。

圖2 LI-6800*的Auto Control功能在算法上允許自定義CO₂控制的起始和終止濃度

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參考文獻

Bellasio C., Beerling D.J. & Griffiths H. (2016a) Deriving C4 photosynthetic parameters from combined gas exchange and chlorophyll fluorescence using an Excel tool: theory and practice. Plant, Cell and Environment 39,1164–1179.

Bellasio C., Beerling D.J. & Griffiths H. (2016b) An Excel tool for deriving key photosynthetic parameters from combined gas exchange and chlorophyll fluorescence: theory and practice. Plant, Cell and Environment 39, 1180–1197.

Duursma R.A. (2015) Plantecophys – an R package for analyzing and modelling leaf gas exchange data. PLoS ONE 10, e0143346.

Davis J.E., Arkebauer T.J., Norman J.M. & Brandle J.R. (1987) Rapid field measurement of the assimilation rate versus internal CO2 concentration relationship in green ash (Fraxinus pennsylvanica Marsh.): the influence of light intensity. Tree Physiology 3, 387–392.

Duursma R.A. & Medlyn B.E. (2012) MAESPA: a model to study interactions between water limitation, environmental drivers and vegetation function at tree and stand levels, with an example application to [CO2] × drought interactions. Geoscientific Model Development 5, 919–940.

Ethier G.J. & Livingston N.J. (2004) On the need to incorporate sensitivity to CO2 transfer conductance into the Farquhar–von Caemmerer–Berry leaf photosynthesis model. Plant, Cell and Environment 27, 137–153.

Farquhar G.D., von Caemmerer S. & Berry J.A. (1980) A biochemical model of photosynthetic CO2 assimilation in leaves of C3 species. Planta 149, 78–90.

Oleson K.W., Lawrence D.M., Bonan G.B., Dreniak B., Huang M., Koven C.D.,… Yang Z.-L. (2013) Technical Description of Version 4.5 of the Community Land Model (CLM). National Center for Atmospheric Research, Boulder, CO

Sharkey T.D., Bernacchi C.J., Farquhar G.D. & Singsaas E.L. (2007) Fitting photosynthetic carbon dioxide response curves for C3 leaves. Plant, Cell and Environment 30, 1035–1040.

Gu L., Pallardy S.G., Tu K., Law B.E. & Wullschleger S.D. (2010) Reliable estimation of biochemical parameters from C3 leaf photosynthesis–intercellular carbon dioxide response curves. Plant, Cell and Environment 33, 1852–1874.

Long S.P. & Hällgren J.E. (1993) Measurement of CO2 assimilation by plants in the field and the laboratory. In Photosynthesis and Production in a Changing Environment: A Field and Laboratory Manual (eds Hall D.O., Scurlock J.M.O., Bolhar-Nordenkampf H.R., Leegood R.C. & Long S.P.), pp. 129–167.

Chapman & Hall, London. Laisk A. & Oja V. (1998) Dynamics of Leaf Photosynthesis: Rapid-response Measurements and Their Interpretations. CSIRO, Collingwood, VIC, Australia.

McDermitt D.K., Norman J.M., Davis J.T., Ball T.M., Arkebauer T.J., Welles J.M. & Roemer S.R. (1989) CO2 response curves can be measured with a field-portable closed-loop photosynthesis system. Annals of Forestry Science 46, 416–420.